AFM／SPMを使用して取得したイメージ写真です。
イメージをクリックすると、拡大写真と詳細説明のページを表示します。
 |
内皮細胞
内皮細胞の蛍光、そして、AFMを同時測定したときの蛍光イメージ。イメージをクリックすると他のすべてのイメージを表示します。
|
|
 |
上皮細胞
蛍光と白色光の中で観察した上皮細胞とカンチレバー。 |
 |
緑膿菌
光学顕微鏡像を利用して、まずサンプルのバクテリアを探し、カンチレバーの位置合わせをします。次に細胞の硬さを調べるために、バクテリア細胞の上で力学測定を行いました。イメージをクリックすると、フォースカーブが表示されます。サンプルは緑膿菌でGFPを示しています。
|
|
 |
緑膿菌
緑膿菌のAFMイメージ。左が10μmスキャンで、右が4μmスキャンに拡大したものです。サンプル提供；カナダ、Guelph大学Terry Beveridge氏のご好意によります。 |
 |
上皮細胞
上皮細胞のＡＦＭ像。80μmスキャン。
|
|
 |
上皮細胞
バイオヒータを用いて37℃の環境に保持したときの上皮細胞の液中ＡＦＭ像。80μmスキャン。 |
 |
毛細血管内皮細胞
ゼラチン基盤上のウシの毛細血管内皮細胞のAFM形状イメージ（左）。同細胞のAFM位相イメージで細胞骨格細部が鮮明に見えています（右）。イメージをクリックすると、フォースカーブ表示されます。A. Chandrasekaran氏とK.J. Van Vliet氏のご好意によります。詳細についてはK.J. Van Vliet, G. Bao and S. Suresh, Acta Materialia 51 (19)5881-5906 (2003).を参照してください。
|
|
 |
DNA
ＤＮＡの液中ＡＦＭイメージ。 2μmスキャン。サンプル提供；ハーバード大学のご好意によります。 |
 |
DNA
ラムダダイジェスト DNAのＡＦＭイメージ。1.5μmスキャン。2nm の高さです。
|
|
 |
DNA
10μg/ml中におけるラムダダイジェストDNAのＡＦＭイメージ。8μmスキャン。16Ｍ以上のメガピクセルイメージ。 |
 |
光学位相コントラスト
上皮細胞とＡＦＭカンチレバーの位相コントラストイメージ。
|
|
 |
DNA量子ドット接合
マイカ基盤上のDNA量子ドット接合です。リングの形状はDNAで、突き出ているのはCdSe量子ドットです。ACモード、６００ｎｍスキャンでイメージをとりました。コネチカット大学、材料科学研究所のMinhua Zhao氏, Charduharshini Srinivasan氏, Jeunghoon Lee氏, そして Bryan Huey氏等のご好意によります。 |
 |
LBバクテリア培地の結晶性パターン
マイカ上で空気乾燥したＬＢバクテリア培地の結晶性パターン。培地の中で成長するバクテリアは見え難くなります。そこでオリンパスＡＣ１６０カンチレバーを使い、MFP-3DのACモードでイメージをとりました。７５μｍスキャン。南カリフォルニア大学研究員のPamela G. Gross氏のご好意によります。
|
|
 |
ラットの脳内皮細胞
生きたGP8ラット脳内皮細胞。この細胞は、１２％PDS (Plasma Derived Serum)を添加した、DMEM/F12(Dulbecco's
Modified Eagles Medium with F12 salt)の中で、ラットの尾の部分のコラーゲンでコートしたペトリ皿に乗せ、密集するほど増殖するまで培養しました。イメージ測定時の液温は約３１℃です。左のイメージは化学療法前のものです。そのイメージング後、サンプルとAFMヘッドを移動させないで、この濃度では可逆性高浸透圧効果をもつ０．５５Mマンニトールを含む同じ溶液で、その培地を交換しました。溶液を交換した後、同一細胞のイメージをとり、マンニトール誘起の変化を見た（右のイメージ）ものです。４０μｍスキャン。ハンガリー科学アカデミー生物研究センター、生物物理研究室のZoltan
Balint氏と Dr. Gyorgy Varos氏のご好意によります。 |
 |
歯のエナメル
ヒトの歯のエナメルの“スムーズ”な表面のＡＦＭ振幅イメージ。イメージは水溶液（ＰＢＳバッファ）中、８μｍスキャンでとりました。ネブラスカ大学、医療センターのDr. L.S. Shlyakhtenko氏のご好意によります。
|
|
 |
緑膿菌バクテリア
ACモードで大気中でイメージングしたマイカ上の単一の緑膿菌バクテリア。５μｍスキャン。 |
 |
肥満細胞の共焦点顕微鏡像とＡＦＭイメージ
骨髄由来肥満細胞をポリリシンコートのカバースリップに拡散させたものです。細胞は固定され、ＣｅｌｌＴｒａｃｅ ＣＦＳＥダイ（Invitrogen社）でラベルし、ＰＢＳバッファ中、４０μｍでスキャンしました。オリンパスＦｌｕｏＶｉｅｗ１０００コンフォーカル顕微鏡と融合させたアサイラム・リサーチ社開発のMFP-3D-CFを使用してイメージ化しました。
|
|
|
|
 |
ITOのSTM像
酸化インジウムスズ（ＩＴＯ）STMイメージ。150nmスキャン。
|
|
 |
インバーのMFM像
Invarに１００μm厚ニッケルをコートした加工表面の磁気力顕微鏡（Magnetic
Force Microscopy ; MFM）によるドメイン構造のイメージ。ARgyleというアサイラムリサーチ社の標準ソフトウエアを用い、形状イメージにＭＦＭイメージを重ねたものです。90μmスキャン。サンプルはVeeco
Metrology社のご好意によるものです。 |
 |
DVD
DVDのピットイメージ。直線性がよく測定されていることが分かります。
|
|
 |
MgO
MgO結晶表面のＡＦＭイメージ。集束イオンビームシステムによって削られ、そしてアニールされた結果、削られた表面にファセットの存在が確認できます。最表面は単原子もしくは2原子のステップで覆われております。20μmスキャン。イメージ提供；S. MacLaren氏とK. Ohmori氏（Univ. of Illinois at Urbana Champaign.）のご好意によります。 |
 |
水滴
へき開直後のマイカ表面上の水滴のＡＦＭイメージ。10μmスキャン。
|
|
 |
カルサイト
過飽和成長溶液中で成長が阻害されたカルサイト（方解石）結晶。40μmスキャン。 |
 |
ナノ多孔質アレイ
アルミニウムの自己組織化陽極反応により作られたナノ多孔質アレイ。5μm×5μm。サンプル提供；A. Janshoff氏（Mainz大学）のご好意によります。
|
|
 |
コンダクティブAFM
ORCA イメージング。左が形状イメージ、右は1.5Vバイアス印加時の電流イメージ（50pAスケール）。2μmスキャン。ZnOサンプル提供；K. Krishnan Lab.氏(Washington大学）のご好意によります。 |
 |
ピエゾ応答
導電性の高いＺｎＯの1.5Ｖ印加時における形状イメージ（左）とピエゾ応答イメージ (右)。 2μm×2μm。サンプル提供；K. Krishnan研究室（Washington大学）のご好意によります。
|
|
 |
GaAs
MBE（分子線エピタキシャル）成長によるGaAsの原子ステップ。5μmスキャン。サンプル提供；T. Dameto-Race氏（LSU）のご好意によります。 |
 |
AlGaAs
MBE成長（分子線エピタキシャル）によるAlGaAsの原子ステップ (コークスクリューパターン）。12μmスキャン。サンプル提供；T. Dameto-Race氏（LSU）のご好意によります。
|
|
 |
DVD
コンダクティブAFMでとったDVD記録マーク。コンダクティブAFMチャンネルを三次元AFM形状像に重ねました。５μｍスキャン。 |
 |
SEBS
三元ブロック共重合体（Poly(styrene-(ethylene-r-butadiene)-styrene)
；SEBS）をシリコンウエハーにスピンコートしたもの。2μmスキャン、ｚレンジ 25nm。Ｐｈａｓｅのレンジは
40°。 このイメージはOpenGLコンパイラーの備わったIGOR Pro’sによって描写しました。サンプル提供；R.
Segalman氏と A. Hexemer氏（Kramer Group, UCSB）のご好意によります。
|
|
 |
ブロック共重合体
ブロック共重合体ミセル（block copolymer micelles）の単分子層。5μm スキャン。サンプル提供；P. Leclere氏（Universite de Mons-Hainaut (Belgium)）のご好意によります。 |
 |
SEBSとデジタルQ コントロール
SEBSのイメージをデジタルQコントロール使用時と通常時で比較したもの。18μm スキャン。
|
|
 |
ブロック共重合体
SEBSをシリコンウエハ上にスピンコートしてAFMでイメージングしました。１６メガピクセル以上のイメージ。５μmスキャン。サンプル提供；Rachel Segalman氏、 Alexander Hexemer氏（米UCSB、Kramer Group）のご好意によります。イメージのムービー。イメージをズームーし、ラメラ構造の細部まで鮮明に見ることができます。最初のフレームは、4096×4096（16Mピクセル）のイメージから始まり、最後のフレームは256×256フのイメージで終ります。このムービーはＩｇｏｒProの内蔵Quickｔime機能を利用して、MFP-3Dソフトウエアの中で作成できます。 |
 |
チオール
Au(111) 表面上におけるチオール分子のナノグラフティング。1.5μm スキャン。M. Liu
氏と G. Liu氏（UC Davis）のご好意によります。
|
|
 |
ナノアレイ
マイクロアンジェロ・ソフトウエアを使用し、異なる負荷を加えてつくった穴のアレイ。5μm スキャン。 |
 |
ポリカーボネート上の食刻
JPEG線画（左）と対応させてナノリソグラフィー（スクラッチ）を行った、ポリカーボネート表面のＡＦＭの位相イメージ（右）。5μmスキャン。元のJPEGイメージはピカソの”ドン・キホーテ”のコピーです。
|
|
 |
鞭毛
カットする前の細菌性鞭毛のイメージです。バイオレバーを使用し、液中AC斥力モードによってとりました。イメージをクリックすると、カッティングの全シーケンスを表示します。 |
 |
ナノワイヤ
カットする前のナノワイヤのイメージです。液中AC斥力モードでとりました。7.4μmスキャン。イメージをクリックすると、マイクロアンジェロによる、カッテイングとプシュイングイメージの全シーケンスを見ることができます。
|
|
 |
単層カーボンナノチューブ
単層カーボンナノチューブ のバンドルを転がすときの、最初のイメージ。1.45μmスキャン。イメージをクリックすると、マイクロアンジェロによるローリングシーケンスの全体を表示します。 |
 |
DNA
ラムダダイジェストDNAのイメージ。1μm スキャン。マウスで選択された異なる3点で測定されたフォースカーブ（右）。B-S転位が、それぞれのフォースカーブに現れています。
|
|
 |
ポリカーボネート上の食刻
マイクロアンジェロ・ソフトウエアを用いてUC Davisの校章をナノリソグラフィーで書いた後にとった、AFM形状と位相のイメージです。 サンプルは、Åスケールの平坦度が得られるフレームポリッシュ加工されたポリカーボネートです。約3N/mの、硬いシリコン長方形カンチレバーによって、物理的にスクラッチしてナノリソグラフィーを行いました。”描く”力（負荷）は約500nN、探針を動かす速さは約700nm/sです。校章は435通りの異なる経路によって描かれ、約２０分要しました。リソグラフィーの力学的な特性のため、線幅はまちまちですが、平均は約40nmです。 |
 |
タイチン
カンチレバーにつながれた、筋肉のタイチンで構成される、縦列反復構造タンパク分子のフォースカーブ。MFP-1D（フォース測定専用機）で測定しました。赤のカーブは実験データ、紫のカーブは
Worm-like chain modelによって得られる理論値です。フィットの隣に添えられた数値は、フィットから得られる全長です。データ提供；Dr.
J. Clarke氏と S. Fowler氏、 A. Steward氏（Cambridge University,
UK）のご好意によるものです。
|
|
 |
DNA B-S転移
ラムダダイジェストDNA 単分子の、力学測定から得られた結果で、B-S 転位および融解を示しています。MFP-1D（フォース測定専用機）で測定しました。分子の引き伸ばしの間（赤）、DNAは最初にB-S転位し(プラトー領域)、さらに強い負荷を加えたときに一本鎖（single-stranded） DNA (ssDNA)に変化します。次に負荷を緩和させていくと（紫）、DNAは元の状態には戻らず、ssDNAを示唆する、自由につながれた直鎖のカーブが得られました。引き離す速さは 1μm/秒です。サンプル提供；H. Claussen-Schaumann氏 と R. Krautbauer氏（Gaub Lab, Ludwig Maximilians University）のご好意によります。 |
|
|
|
